La collecte d’insectes est un passe-temps intéressant pour beaucoup, mais elle est aussi très utile dans la recherche scientifique. Ce post expliquera comment collecter et conserver les insectes, et montrera comment ils doivent être épinglés.
La collecte d’insectes peut se faire à tout moment, bien qu’ils soient principalement présents au printemps, jusqu’à la fin de l’automne. L’été est probablement la meilleure période, car les insectes sont les plus abondants. Les jours chauds et ensoleillés auront probablement le plus d’insectes présents, cependant il serait sage de vérifier tout au long de différentes périodes et conditions météorologiques, car différents insectes émergeront à différents moments. La nuit, les lampadaires et les lampes de porche sont un bon endroit où regarder. La litière de feuilles et les plantes sont susceptibles d’abriter des insectes, et il y a aussi beaucoup d’insectes nocturnes qui restent loin des lumières.
Équipement de collecte :
- Filet à insectes – Ils peuvent être achetés ou fabriqués. Ils doivent être fabriqués à partir d’un filet, qui est cousu à une mousseline ou à une toile qui s’enroule autour du fil. De là, l’insecte peut être transféré dans un bocal, soit en mettant le bocal dans le filet, soit en tenant l’insecte par le thorax.
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Mon bocal à tuer. PC : Colton Weaver Bocal de mise à mort – Il est préférable d’avoir 2 ou 3 bocaux de différentes formes et tailles. Idéalement, ils sont bouchés, cependant cela peut dépendre. Ils doivent être étiquetés de manière bien visible « POISON ». Du plâtre ou du coton est ajouté au bocal pour contenir l’agent de destruction. Borror, Delong et Triplehorn recommandent le cyanure, mais l’acétate d’éthyle peut également être utilisé et est nettement plus sûr. Le tétrachlorure de carbone ou le chloroforme peuvent également être utilisés.
- Cases à pilules avec du tissu
- Enveloppes, ou papier pour les fabriquer – Utile pour le stockage temporaire. Elles peuvent être facilement construites sur le terrain et garderont vos spécimens relativement en sécurité.
- Flacons remplis de liquide de conservation
- Forceps
- Lentille à main
- Aspirateur – Ceux-ci capturent les petits insectes dans les flacons en utilisant votre souffle. Généralement, ils ont un écran pour vous empêcher de respirer l’insecte.
- Parapluie ou drap battant – Un drap ou un parapluie est placé sous une plante, qui est ensuite battue ou secouée pour que les petits insectes tombent sur le drap.
- Tamis – La litière de feuilles peut être tamisée lentement sur un tissu blanc ou un carton, puis les insectes trouvés peuvent être aspirés.
- Pièges – Il existe de nombreux types de pièges. Un entonnoir Berlese a un entonnoir avec un écran, et une ampoule sur le dessus, avec de l’alcool au fond. Les insectes sont attirés puis tombent dans le bocal d’abattage. Un piège lumineux peut être efficace sur certains insectes, et peut être aussi simple qu’une lumière au-dessus de l’agent de destruction, ou un piège à pied où les insectes se posent et peuvent être collectés à la main. Les pièges à fosse peuvent être utilisés pour les charognards ou d’autres insectes non volants, et sont simplement des boîtes de conserve avec un appât au fond. Les insectes tombent dedans et ne peuvent pas s’échapper. Un piège simple pourrait simplement être une solution de sucre étalée sur une surface.
- La lampe frontale
- Le couteau à fourreau
Manipulation de la prise : De nombreux insectes à corps mou peuvent être placés directement dans de l’alcool isopropylique ou éthylique à 70-90%. Cela inclut les larves et les nymphes de nombreuses espèces, ainsi que certains insectes plus petits. Les insectes à corps dur doivent être placés dans le bocal de destruction. Le temps que cela prend dépend de l’insecte et de l’agent de destruction, et peut aller de quelques minutes à quelques heures. Lorsque l’insecte est mort, il faut l’enlever le plus rapidement possible pour éviter une décoloration supplémentaire. On peut les conserver dans des piluliers ou dans les enveloppes en papier décrites ci-dessus.
Relâchement : Si vous ne pouvez pas épingler et étaler un spécimen immédiatement, il risque de sécher. Lorsqu’il est dans cet état, il est assez cassant et se brisera si vous essayez de l’arranger. Pour remédier à cela, vous pouvez soit utiliser une chambre de relaxation, un liquide relaxant, ou faire bouillir l’insecte dans l’eau (cependant, cela peut l’endommager).
Les chambres de relaxation sont des récipients avec du sable ou du tissu humide à l’intérieur. Idéalement, il faut ajouter de l’acide carbolique pour éviter toute moisissure. Après un jour ou deux, vous devriez être en mesure de manipuler à nouveau le spécimen.
Le liquide de relaxation peut être fait de différents mélanges, et généralement vous laissez l’insecte dedans pendant plusieurs minutes. Un mélange, souvent connu sous le nom de fluide de Barber, est indiqué ci-dessous :
| Acool éthylique à 95 % | 50 cm3 |
| Eau | 50cm3 |
| Ethyl acétate | 20cm3 |
| Benzène | 7cm3 |
Une autre méthode qui peut être utilisée est l’injection d’eau du robinet. Cela fonctionne sur de nombreux lépidoptères. À l’aide d’une aiguille de calibre 20-25, injectez de l’eau dans le thorax sous l’aile jusqu’à ce qu’elle soit complètement remplie. Après 5 à 20 minutes, votre insecte devrait être détendu.
Préservation dans un fluide : Ceci peut être utilisé sur de nombreux insectes à corps mou (comme les éphémères, les perles, les trichoptères, etc), qui ne peuvent pas être épinglés à moins qu’ils ne soient séchés comme mentionné ci-dessus. ), qui ne peuvent pas être épinglés à moins d’être séchés comme indiqué ci-dessus. Il est également utile pour les très petits spécimens qui vont être étudiés sur des lames de microscope, ainsi que pour les larves et les nymphes d’insectes. Les arthropodes non insectes devraient être conservés de cette façon également.
Epinglage : C’est le moyen le plus simple de conserver un insecte à corps dur. Les couleurs s’estompent souvent lorsque l’insecte sèche, cependant il est difficile de l’éviter. Il faut utiliser des épingles à insectes spécialisées, qui sont plus longues et ne rouillent pas. Elles sont disponibles dans les tailles 00-7, mais les plus petites peuvent être moins utiles. Les différents ordres doivent être épinglés à des endroits différents, ce qui est illustré. Les pattes doivent être allongées, ainsi que les ailes. Souvent, les abeilles auront leur langue étendue pour faciliter leur identification.
Il est préférable que toutes les espèces d’une collection soient épinglées à des distances uniformes. Environ 25 mm au-dessus du point est idéal, et des distances uniformes peuvent facilement être atteintes en utilisant un bloc d’épinglage, qui est simplement un bloc de bois avec des trous percés à différentes profondeurs.
Épandre un insecte est beaucoup une question de pratique. L’utilisation d’une planche d’épandage rend la tâche beaucoup plus facile,
et avoir des épingles et des bandes de papier supplémentaires est essentiel. Les épingles peuvent être utilisées pour déplacer les membres et les ailes.
Typiquement, la pression doit être appliquée sur la veine marginale antérieure de l’aile, en particulier chez les Lépidoptères. La marge arrière des ailes d’un Lépidoptère doit être à angle droit avec son thorax, et les ailes postérieures relevées de façon à ce qu’il n’y ait pas d’espace entre elles et les ailes antérieures, comme illustré. Il est important d’être très prudent et d’utiliser des pinces pour manipuler les insectes. Ils sont très fragiles, et souvent les écailles et l’antenne peuvent être facilement arrachées. Des bandes de papier et des épingles peuvent être utilisées pour fixer les ailes, et elles resteront ensuite en position après avoir séché.
Les petits insectes nécessitent un peu d’ingéniosité pour être montés, et peuvent être collés sur des pointes de carte, des épingles minuscules, ou des lames microscopiques. Il suffit d’épingler la pointe de la carte, de mettre une minuscule quantité de colle dessus, puis de coller l’insecte.
Séchage : De nombreux insectes épinglés peuvent être séchés à l’air libre dans un endroit chaud et sec. Les plus grands papillons de nuit peuvent avoir besoin d’une chambre de séchage avec une ou plusieurs ampoules à l’intérieur, et certains grands spécimens peuvent même avoir besoin d’avoir leurs organes abdominaux retirés. Il n’y a pas de temps définitif pour qu’un spécimen sèche, cependant cela viendra avec l’expérience.
Les insectes à corps mou peuvent être lyophilisés ou séchés sous vide, puis épinglés, pour créer un spécimen non fragile et non décoloré. Typiquement, ils se ratatinent, mais cette étape les rend suffisamment secs pour rester sur une épingle.
Typiquement, on utilise une solution d’alcool éthylique. Certaines courantes sont énumérées ci-dessous.
| Solution de Hood | |
| 70-Alcool éthylique à 80% | 95 cm3 |
| Glycérine | 5 cm3 |
| Solution de Kahle | |
| 95%. Alcool Ethylique | 30 cm3 |
| Formaldéhyde | 12 cm3 |
| Acide acétique glacial | 4 cm3 |
| Eau | 60 cm3 |
| Solution alcoolique de Bouin | |||
| Alcool éthylique à 80 % | 150 cm3 | ||
| Formaldéhyde | 60 cm3 | Acide acétique | 4 cm3 |
| Eau | 60 cm3 | . | 60 cm3 |
| Acide acétique glacial | 15 cm3 | ||
| Acide nitrique | 1g |
Pendant que nous sommes sur le sujet des solutions, L’acétate d’éthyle peut souvent être inefficace sur les larves, alors voici des agents de destruction qui sont suffisants :
| Mélange KAD | |
| 95% Alcool éthylique | 70-.100 cm3 |
| Kérosène (réduire pour les larves à corps mou comme les asticots) | 10 cm3 |
| Acide acétique glacial | 20 cm3 |
| Dioxane | 10 cm3 |
| Mélange XA | |
| Acétate d’éthyle à 95 % | 50 cm3 |
| Xylène | 50 cm3 |
Les deux méthodes devraient prendre 1/2 à 4 heures. Tous les agents de destruction connus enlèvent la couleur, en particulier les verts, permet et les rouges.
Typiquement, les spécimens conservés devraient être inspectés une ou deux fois par an, au cas où un liquide se serait évaporé. Si c’est le cas, il faut le remplacer.
Montage sur les lames de microscope : Il existe deux types de montages pour microscope : permanent et temporaire. Ils utilisent des milieux d’enrobage différents, et les enrobages temporaires ont généralement leurs spécimens remis dans le conservateur après l’enrobage, où ils peuvent être conservés indéfiniment. Les montages permanents sont montés une fois et ne peuvent ensuite plus être retirés, mais ils peuvent durer assez longtemps, voire plusieurs années.
De nombreux insectes à corps mou peuvent être mis directement dans le milieu de montage, mais certains doivent d’abord être dégagés dans un fluide spécial. Les principales solutions utilisées à cet effet sont le KOH et la solution de Nesbitt. Ce processus implique souvent que l’insecte trempe pendant plusieurs heures à plusieurs jours lorsqu’il est fait à froid, bien qu’il puisse être fait plus rapidement en utilisant la chaleur et le KOH.
Les petits spécimens peuvent être montés dans une lame normale, tandis que les plus grands peuvent avoir besoin d’une lame à dépression ou d’un support pour le verre de couverture.
Les milieux utilisés pour les montages temporaires sur lame comprennent l’eau, l’alcool, la glycérine et la gelée de glycérine. L’eau et l’alcool peuvent ne durer que quelques minutes avant de s’évaporer, donc la glycérine est généralement utilisée si les spécimens veulent être étudiés pendant une période prolongée.
Ceci conclut ce post, et la section de préservation de Borror, Delong, et Triplehorn. La plupart du reste du travail sur ce SOS sera de compiler mes documents, et mes diapositives, ainsi que de s’assurer que mes organigrammes et mon protocole sont tous en ordre.