A recolha de insectos é um hobby interessante para muitos, mas é também muito útil na investigação científica. Este post vai explicar como coletar e preservar os insetos, e mostrar como eles devem ser fixados por alfinete.
A coleta de insetos pode ser feita a qualquer momento, embora eles estejam presentes principalmente durante a primavera, até o final do outono. O verão é provavelmente a melhor época, já que os insetos são mais abundantes. Os dias quentes e ensolarados terão provavelmente a maior parte dos insectos presentes, no entanto seria sensato verificar ao longo dos diferentes tempos e condições meteorológicas, uma vez que diferentes insectos surgirão em diferentes alturas. À noite, as luzes das ruas e do alpendre são um ótimo lugar para se olhar. É provável que o lixo das folhas e as plantas alberguem insectos, e também há muitos insectos nocturnos que ficam longe das luzes.
Equipamento de recolha:
- Inseto Rede – Estes podem ser comprados ou feitos. Devem ser feitas de rede, que é costurada a uma musselina ou tela de lona que envolve o arame. A partir daí, o insecto pode ser transferido para um frasco, quer colocando o frasco na rede, quer segurando o insecto pelo tórax.
-
Meu frasco de matança. PC: Colton Weaver Jarra de matar – É melhor ter 2-3 jarros em vários formatos de tamanhos. O ideal é que sejam arrolhados, no entanto isso pode depender. Eles devem ser rotulados conspicuamente como “POISON”. O gesso ou algodão é adicionado ao frasco para segurar o agente da matança. Borror, Delong e Triplehorn recomendam cianeto, porém o acetato de etilo também pode ser usado e é significativamente mais seguro. Tetracloreto de carbono ou clorofórmio também pode ser usado.
- Pillboxes com tecido
- Envelopes, ou papel para fazê-los – Útil para armazenamento temporário. Estes podem ser facilmente construídos no campo e irão manter as suas amostras relativamente seguras.
- Vials preenchidos com líquido conservante
- Forceps
- Lentes das mãos
- Aspirador – Estes capturam pequenos insectos em frascos usando o seu hálito. Normalmente têm uma tela para evitar que você respire o inseto.
- Bater guarda-chuva ou folha – Uma folha ou guarda-chuva é colocada debaixo de uma planta, que é batida ou sacudida para que os pequenos insetos caiam sobre a folha.
- Sifter – A ninhada da folha pode ser peneirada lentamente sobre um pano branco ou papelão, e então os insetos encontrados podem ser aspirados.
- Armadilhas – Existem muitos tipos de armadilhas. Um funil Berlese tem um funil com uma tela, e uma lâmpada em cima, com álcool na parte inferior. Os insectos são atraídos e caem no frasco da matança. Uma armadilha luminosa pode ser eficaz em alguns insectos, e pode ser tão simples como uma luz por cima do agente assassino, ou uma caminhada em armadilha onde os insectos se instalam e podem ser recolhidos à mão. As armadilhas podem ser usadas em besouros de carniça ou outros insectos não voadores, e são simplesmente latas com isco no fundo. Os insectos caem então não podem escapar. Uma armadilha simples pode ser apenas uma solução de açúcar espalhada numa superfície.
- Headlamp
- Sheath Knife
Manuseando a Apanha: Muitos insectos de corpo macio podem ser colocados directamente em 70-90% de álcool isopropílico ou etílico. Isto inclui larvas e ninfas de muitas espécies, assim como alguns insetos menores. Os insectos de corpo duro devem ser colocados no frasco da matança. O tempo que leva depende tanto do insecto como do agente da matança, e pode variar entre alguns minutos a algumas horas. Quando o insecto está morto, deve ser removido o mais rápido possível para evitar descoloração adicional. Estes podem ser armazenados em caixas de comprimidos ou nos envelopes de papel descritos acima.
Relaxamento: Se não se conseguir prender e espalhar uma amostra imediatamente, é provável que seque. Quando está neste estado, é bastante quebradiço e se quebrará se você tentar arrumá-lo. Para fixar isto, você pode usar uma câmara relaxante, líquido relaxante, ou ferver o inseto em água (entretanto isto pode danificá-lo).
Câmaras relaxantes são recipientes com areia molhada ou pano dentro. Idealmente, o ácido carbólico deve ser adicionado para evitar qualquer moldagem. Após um ou dois dias você deve ser capaz de manipular a amostra novamente.
Relaxante líquido pode ser feito a partir de diferentes misturas, e geralmente você deixa o inseto dentro dele por vários minutos. Uma mistura, muitas vezes conhecida como o líquido do barbeiro, está listada abaixo:
| 95% álcool etílico | 50 cm3 |
| Água | 50cm3 |
| Etilo acetato | 20cm3 |
| Benzeno | 7cm3 |
Outro método que pode ser usado é a injecção de água da torneira. Isto funciona em muitos Lepidoptera. Usando uma agulha calibre 20-25, injetar água no tórax sob a asa até que esteja completamente cheia. Após 5-20 minutos, seu inseto deve estar relaxado.
Preservação em Líquido: Isto pode ser usado em muitos insectos de corpo macio (como as mayflies, stoneflies, caddisflies, etc.), que não podem ser fixados com alfinetes a menos que estejam secos, como mencionado acima. Também é útil para espécimes muito pequenos que vão ser estudados em lâminas de microscópio, e larvas e ninfas de insectos. Artrópodes não-insetos também devem ser preservados desta forma.
Pinning: Esta é a maneira mais fácil de preservar um insecto de corpo duro. As cores frequentemente desbotam quando o inseto seca, porém isto é difícil de evitar. Devem ser usados pinos especiais para insetos, que são mais longos e não enferrujam. Estes estão disponíveis nos tamanhos 00-7, no entanto os mais pequenos podem ser menos aplicáveis. As diferentes ordens devem ser fixadas em áreas diferentes, o que é ilustrado. As pernas devem ser estendidas, assim como as asas. Muitas vezes as abelhas terão a língua estendida para facilitar a identificação.
É melhor se todas as espécies de uma colecção forem fixadas a distâncias uniformes. Cerca de 25mm acima do ponto é ideal, e distâncias uniformes podem ser facilmente alcançadas usando um bloco de pinos, que é simplesmente um bloco de madeira com furos feitos a diferentes profundidades.
Espalhar um inseto é muito prático. Usar uma tábua de espalhamento facilita muito a tarefa,
e ter pinos e tiras de papel extras é essencial. Os pinos podem ser usados para se mover em torno de membros e asas,
Tipicamente a pressão deve ser aplicada na veia marginal frontal da asa, especialmente em Lepidoptera. A margem posterior das asas de um Lepidoptera deve estar em ângulo reto com o tórax, e as asas posteriores para cima para que não haja folga entre elas e as asas anteriores, como ilustrado. É importante ter muito cuidado, e usar fórceps para lidar com os insetos. Eles são muito frágeis, e muitas vezes escalas e antenas podem ser facilmente derrubadas. Tiras de papel e pinos podem ser usados para prender as asas, e então eles permanecerão na posição após secarem.
Insetos pequenos precisam de algum engenho para serem montados, e podem ser colados em pontas de cartão, pinos minúsculos, ou lâminas microscópicas. Basta fixar a ponta da carda, colocar uma pequena quantidade de cola e depois colar o inseto.
Secar: Muitos insectos com alfinetes podem ser secos ao ar, num local quente e seco. As traças maiores podem precisar de uma câmara de secagem com uma ou várias lâmpadas no interior, e alguns espécimes grandes podem até precisar que os seus órgãos abdominais sejam removidos. Não há tempo definitivo para secar um espécime, no entanto isso virá com a experiência.
Os insetos de corpo inteiro podem ser congelados ou secos a vácuo e depois presos com pinos, para criar um espécime não frágil e não descolorido. Tipicamente eles murchariam, porém este passo os faz secar o suficiente para ficar em um pino.
Tipicamente uma solução de álcool etílico é usada. Alguns comuns estão listados abaixo.
| Solução do capuz | |
| 70-80% Álcool etílico | 95 cm3 |
| Glicerina | 5 cm3 |
| Solução de Kahle | |
| 95% Álcool etílico | 30 cm3 |
| Formaldeído | 12 cm3 |
| Ácido acético glacial | 4 cm3 |
| Água | 60 cm3 |
| Solução de Bouin Alcoólico | |
| 80% Álcool etílico | 150 cm3 |
| Formaldeído | 60 cm3 |
| Ácido acético glacial | 15 cm3 |
| Ácido pítrico | 1g |
Só estamos sobre o tema das soluções, O acetato de etilo pode muitas vezes ser ineficaz em larvas, por isso aqui estão os agentes assassinos que são suficientes:
| mistura de acetato de etilo | |
| 95% Álcool etílico | 70-100 cm3 |
| Querosene (reduzir para larvas de corpo mole, como larvas) | 10 cm3 |
| Ácido acético glacial | 20 cm3 |
| Dioxano | 10 cm3 |
| XA mistura | |
| 95% Acetato de Etilo | 50 cm3 |
| Xileno | 50 cm3 |
Cambos os métodos devem demorar 1/2 – 4 horas. Todos os agentes assassinos conhecidos removem a cor, especialmente os verdes, permitem, e os vermelhos.
Tipicamente, as amostras preservadas devem ser inspecionadas uma ou duas vezes por ano, caso algum líquido se tenha evaporado. Se assim for, deve ser substituído.
Montagem em Lâminas de Microscópio: Há dois tipos de montagens de microscópio: permanentes e temporárias. Eles usam meios de montagem diferentes, e as montagens temporárias geralmente têm seus espécimes devolvidos ao conservante após a montagem, onde podem ser mantidos indefinidamente. As montagens permanentes são montadas uma vez e depois não podem ser removidas, contudo podem durar bastante tempo, mesmo vários anos.
Muitos insectos de corpo mole podem ser colocados directamente no meio de montagem, contudo alguns precisam de ser limpos num líquido especial primeiro. As principais soluções utilizadas para isso são a solução KOH e Nesbitt. Este processo frequentemente envolve a imersão do inseto por várias horas a muitos dias quando feito frio, embora possa ser feito mais rapidamente usando calor e KOH.
Exemplos pequenos podem ser montados em uma lâmina normal, enquanto os maiores podem precisar de uma lâmina de depressão ou suporte para o vidro de cobertura.
Os meios usados para montagens temporárias de lâminas incluem água, álcool, glicerina e geléia de glicerina. Água e álcool podem durar apenas alguns minutos antes de evaporar, portanto a glicerina é geralmente usada se os espécimes quiserem ser estudados por qualquer período prolongado de tempo.
Que conclui este post, e a seção de preservação de Borror, Delong, e Triplehorn. A maior parte do resto do trabalho neste SOS estará compilando meus documentos e slides, assim como assegurando que meus fluxogramas e protocolos estejam todos em ordem.